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425 人阅读发布时间:2025-03-28 09:19
CRISPR-Cas9技术彻底革新了基因编辑方法,可高效地实现基因敲除、敲入、上调、或者敲低。为获得成功的编辑效果,使用CRISPR-Cas9系统时需要考虑一系列策略以及载体优化的方式。本文将就此进行相关介绍。
CRISPR系统简介
CRISPR-Cas9系统包含多个组分,这些组分根据所需的应用类型、载体系统和目标细胞类型而有所不同。然而,所有CRISPR系统都包含两个关键组分:Cas9核酸酶和向导RNA(gRNA)。
☞ gRNA是一种短RNA序列,通过与基因组上的DNA靶序列互补配对引导Cas9到达靶位点。
☞ Cas9是一种RNA引导的DNA核酸酶,只要靶序列相邻于一个称为原间隔相邻基序(PAM)的短DNA序列,它就可以在特定的基因组位置引入双链断裂(DSB)。一旦在目标位点引入DSB,细胞就会使用两种主要的DNA修复途径中的一种来修复断裂。

图1 CRISPR引发的DNA修复机制
>非同源末端连接(NHEJ):该种修复途径通常会引入小的插入或碱基缺失,可导致移码突变,扰乱蛋白质编码区域以及蛋白质生产过程。NHEJ可导致基因敲除,但是修复精度较差,会让被编辑细胞产生不同的细胞群。
>同源定向修复(HDR):该机制使用了一个供体DNA模板以实现更精确的DNA修复。通过使用外源供体序列,可在DSB的靶位点处引入点突变或者大片段敲入/敲除。长度<60 bp的单链寡核苷酸(ssODN)可用作小片段插入,而dsDNA可用于大片段插入(可达4-5 kb),比如荧光标签。
由于CRISPR应用的多样性,使用者需要考虑适合的Cas蛋白类型。来源于Streptococcus pyogenes 的SpCas9是最常用的Cas蛋白,其经过密码子优化可以适用于多种物种。Cas蛋白也具有除了基因敲除外的多种应用范畴,具体如下表所示:

*对于Cas9切刻酶、引导编辑器、dCas9以及碱基编辑器、PAM序列通常源于基本的SpCas9系统(NGG)
根据应用和研究问题的不同,CRISPR-Cas9系统可以以反向遗传学的方式使用,该方法侧重于基因功能的研究或调控。另一方面,CRISPR-Cas9系统也可以用于制备gRNA文库,以正向遗传学的方式进行大规模基因功能筛选。通过设计靶向基因组中每个基因或特定基因集合的gRNA,可以筛选并识别与表型、通路或疾病相关的基因。
设计高效的CRISPR载体
优化CRISPR实验对于实现成功且可重复的结果至关重要,涉及选择正确的Cas9版本、目标区域、gRNA和递送方法等方面。根据我们多年的基因递送经验,以下的实用技巧可帮助您完成一个高效的CRISPR载体设计:
1. 靶位点选择:靶位点的选择取决于实验目的和应用。对于基因敲除或敲入,通常选择蛋白质编码区域(外显子)作为靶位点。对于基因调控研究,非编码调控区域(启动子、增强子、内含子等)可用作靶位点。
2. Cas9选择:选择使用哪一种Cas9会是一个关键的决定,这将确保酶的功能符合其应用目的。这种选择需要参照您的实验目的和所使用的载体系统(见上表)。
3. gRNA选择,单gRNA/双gRNA:在大多数情况下,对于简单的基因敲除,一个正确的Cas9配对单gRNA就能产生所需的表型。而对于以下的特定情况,双gRNA是更好的选择:
(1)当使用Cas9_D10A切刻酶靶向单一位点相对的两条DNA链时,需要两个gRNA共同产生DSB以减少脱靶效应;
(2)在靶位点上创建DSB并删除DSB之间的DNA片段,该DSB的创建需要一对gRNA;
(3)同时靶向两个不同的基因。
4. PAM和gRNA的兼容性:gRNA和PAM序列的选择取决于所选的Cas9版本,因为每个Cas9都需要识别特定的PAM序列。选择一个合适的PAM序列对于gRNA有效打靶和最小化脱靶效应是至关重要的。
5. CRISPR载体选择,All-in-one载体与分离的单独载体:使用CRISPR系统要实现成功的基因编辑,靶细胞必须共表达Cas9和gRNA。递送这两个组分可以使用All-in-one载体一起递送,也可以使用两个单独的载体分别递送。
All-in-one载体在一个步骤中即可递送所有必要的组分,简化了CRISPR载体的使用,有利于各组分高效的共表达。相比之下,使用分离的单独载体需要共转导,这在实验操作上更具有挑战性,因为实际转导时,一些细胞可能只接受到一个载体。然而对于使用带有标签或标记基因的修饰Cas9蛋白时,使用单独载体更为可行,因为这些修饰使用All-in-one载体时会更容易触及载体装载上限,影响转导效率。一个改进的方式是使用表达Cas9蛋白以及gRNA的细胞稳转株(无论是持续表达抑或诱导表达),尽管这将耗费更多的时间和人力。
6.报告基因系统选择:将用于筛选的标记基因(如抗生素耐药性)或荧光报告基因(如GFP、RFP)整合到CRISPR载体中将有助于识别和分离成功转导或编辑的细胞。这一步骤可以显著提高实验的效率和准确性。
7. 基因递送系统选择:递送方法因靶细胞的种类、体内的位置和应用方式而异。病毒载体(比如慢病毒或AAV)是针对难转染细胞和体内应用的理想选择,他们具有高的转导效率,并且可以选择瞬时或长期表达。然而需注意病毒载体的生产复杂,并且可能会带来更高的免疫原性和毒性。非病毒方法,比如基于脂质纳米颗粒的转染或电穿孔,实施起来更为简单,但通常与较低的递送效率相关,可能难以应用于某些细胞或组织类型。
8. HDR系统的供体DNA选择:对于使用HDR原理精确编辑,ssODN通常用于短序列的插入(<60 bp),如小型蛋白标签或点突变;而dsDNA供体则允许插入更大的序列(高达4-5 kb),例如荧光标签或报告基因。
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